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華大科技

 DocShu乳甲外科 2018-07-12

       蛋白定量DIA產(chǎn)品,主要采用數(shù)據(jù)非依賴性采集模式(data independent acquisition,DIA),通過液質(zhì)聯(lián)用技術(shù)(LC-MS/MS)對蛋白質(zhì)酶解肽段進(jìn)行質(zhì)譜分析,結(jié)合傳統(tǒng)的數(shù)據(jù)依賴性采集模式(datadependent acquisition,DDA)構(gòu)建的譜圖庫,利用業(yè)內(nèi)頂尖的商業(yè)化DIA分析軟件Spectronaut,可對蛋白質(zhì)組進(jìn)行鑒定、定量,獲得肽段、蛋白及所屬物種來源、蛋白表達(dá)量變化等信息。

 產(chǎn)品優(yōu)勢

蛋白定量DIA技術(shù),采用全景式數(shù)據(jù)采集模式,效果對比下:

DIA vs DDA

圖1 HRM(DIA)vs Shotgun proteomics(DDA)

圖中橫坐標(biāo)是分組的樣本編號,縱坐標(biāo)是蛋白質(zhì)種類,該圖展示的是各樣本中,不同質(zhì)譜采集模式下,蛋白質(zhì)峰強(qiáng)度情況。其中DIA比DDA的峰強(qiáng)度覆蓋度更好,偏向性較??;DDA缺失值較多,并且對高豐度肽段有偏向性。

  • 鑒定數(shù)高:鑒定數(shù)提高30%;一針組織樣本鑒定數(shù)可達(dá)7000+
  • 重復(fù)性好:技術(shù)重復(fù)性提高30%,可達(dá)90%
  • 定量準(zhǔn)確性好:通過二級譜峰面積定量,大項(xiàng)目質(zhì)控CV低至25%
  • 質(zhì)控完善:加入iRT校正;QC樣本重復(fù)性CV<>
  • 周期短:實(shí)際樣本上機(jī)不分組,提高結(jié)果重復(fù)性的同時(shí),壓縮周期3倍以上
  • 費(fèi)用低:降低費(fèi)用3倍以上

 

產(chǎn)品應(yīng)用

圖片 2


技術(shù)路線

DIA技術(shù)路線


 信息分析內(nèi)容

信息分析條款

信息分析內(nèi)容

標(biāo)準(zhǔn)信息分析

譜圖庫構(gòu)建

1.1 數(shù)據(jù)產(chǎn)出統(tǒng)計(jì)

1.2 譜圖庫鑒定結(jié)果

標(biāo)準(zhǔn)信息分析內(nèi)容

2.1 數(shù)據(jù)產(chǎn)出統(tǒng)計(jì)

2.2 數(shù)據(jù)質(zhì)控(組內(nèi)變異系數(shù)、主成分分析以及樣本定量相關(guān)性)

2.3 蛋白質(zhì)鑒定和定量結(jié)果

2.4 蛋白質(zhì)GO分析

2.5 蛋白質(zhì)COG/KOG分析

2.6 蛋白質(zhì)Pathway代謝通路分析

2.7 差異蛋白的GO富集分析

2.8 差異蛋白COG/KOG富集分析

2.9 差異蛋白的Pathway富集分析

2.10 重復(fù)性分析(僅針對設(shè)計(jì)了重復(fù)的實(shí)驗(yàn))

2.11多樣品間表達(dá)模式聚類(三個(gè)或三個(gè)以上樣品可提供)

2.12 時(shí)間序列分析

2.13 差異表達(dá)蛋白互作分析

2.14 差異表達(dá)蛋白亞細(xì)胞定位

定制化信息分析

蛋白質(zhì)組與轉(zhuǎn)錄組/RNA-seq表達(dá)量關(guān)聯(lián)分析

3.1 表達(dá)量關(guān)聯(lián)分析:

3.1.1 從鑒定、定量、差異三個(gè)層面進(jìn)行關(guān)聯(lián)統(tǒng)計(jì)

3.1.2 對定量層面關(guān)聯(lián)結(jié)果細(xì)分為如下五類,并分別對其做GO/COG/Pathway注釋分析:

         蛋白和mRNA表達(dá)趨勢相同;
         蛋白和mRNA表達(dá)趨勢相反;
         蛋白無變化,mRNA差異表達(dá);
         mRNA無變化,蛋白差異表達(dá);
         蛋白和mRNA均無變化。

3.1.3 蛋白組與轉(zhuǎn)錄組聚類分析

3.2 功能富集關(guān)聯(lián)分析

3.2.1 GO富集關(guān)聯(lián)分析

3.2.2 Pathway富集關(guān)聯(lián)分析

3.3 轉(zhuǎn)錄組和蛋白組的Pathway整合圖


1、11家實(shí)驗(yàn)室SWATH*技術(shù)平行性評測

Multi-laboratory assessment of reproducibility,qualitative and quantitative performance of SWATH-mass spectrometry. Nature communications. 2017.

*注:SWATH技術(shù)與DIA技術(shù)原理相同,同為二級譜采集荷質(zhì)比范圍內(nèi)全部母離子的碎片離子信息,但不同儀器公司開發(fā)此技術(shù)時(shí)使用的名稱有別,故可以理解為同一種技術(shù)。

背景:實(shí)驗(yàn)結(jié)果可重復(fù)是科學(xué)研究最基礎(chǔ)的原則。本文評估了全球11家實(shí)驗(yàn)室共同鑒定和定量到的蛋白數(shù)據(jù)集,其重現(xiàn)性、線性動態(tài)范圍和靈敏度都非常接近于SRM——蛋白定量金標(biāo)準(zhǔn)。這份數(shù)據(jù)支持SWATH聯(lián)合肽段標(biāo)準(zhǔn)打分的分析方法,適合于大范圍實(shí)驗(yàn)室間全面、重現(xiàn)性好的蛋白組研究。

方法思路

圖1

圖1 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

30個(gè)穩(wěn)定同位素標(biāo)記肽段(SIS)分成5組(group A-E),每組6種肽段,每組樣本中肽段的稀釋濃度從1fmol到10pmol(綠色標(biāo)記S5),然后將每組肽段稀釋4次后混入HEK293樣本中(S1-4),獲得一系列稀釋濃度從0.012到10000fmol。將樣本分成相同的11份分發(fā)給全球范圍內(nèi)的11個(gè)實(shí)驗(yàn)室,評估1天、1周內(nèi)不同地點(diǎn)的數(shù)據(jù)采集情況。

 

主要結(jié)論:

1)蛋白鑒定情況

在全球11個(gè)實(shí)驗(yàn)室采集的229份SWATH-MS數(shù)據(jù)中,過濾條件為蛋白水平FDR 1%,共檢測到4984種蛋白,4077種蛋白在超過80%的樣本中被檢測到。

圖2

圖2  蛋白鑒定的數(shù)目和一致性

每種顏色代表一個(gè)實(shí)驗(yàn)室的所有數(shù)據(jù),11個(gè)實(shí)驗(yàn)室所有數(shù)據(jù)集的重復(fù)性中位數(shù)是91.6%(蛋白水平)和79.5%(肽段水平)

 2)定量重現(xiàn)性

經(jīng)過肽段水平的中位數(shù)均一化后,利用4077種在超過80%樣本中檢測到的蛋白去計(jì)算同一天內(nèi)、不同天內(nèi)、不同實(shí)驗(yàn)室數(shù)據(jù)采集之間的變異系數(shù),分別是8.3 ± 16.2%, 11.9 ±17.2%, and 22.0 ± 17.4%。

 圖3

圖3

圖3 變異系數(shù)

比較單個(gè)實(shí)驗(yàn)室一天內(nèi)、不同天內(nèi)的CV變化,以及不同實(shí)驗(yàn)室間的CV變化

 3)線性和動態(tài)范圍

利用樣本中加入的同位素標(biāo)準(zhǔn)肽段,在每個(gè)實(shí)驗(yàn)室計(jì)算梯度濃度設(shè)置的標(biāo)準(zhǔn)肽定量結(jié)果線性擬合系數(shù),平均決定系數(shù)(R2)是0.97。去除高濃度肽段信號飽和的點(diǎn),決定系數(shù)增加到0.99。在樣本之間設(shè)置的標(biāo)準(zhǔn)肽理論倍數(shù)有9和27,實(shí)際檢測到的差異倍數(shù)是7.49和19.6,主要原因也是高濃度的標(biāo)準(zhǔn)肽已經(jīng)導(dǎo)致質(zhì)譜儀信號檢測飽和。

 圖4 圖4

圖4 平均峰面積和蛋白水平動態(tài)范圍統(tǒng)計(jì)

平均峰面積圖各點(diǎn)連接顯示出各實(shí)驗(yàn)室間良好的線性指標(biāo)(圖左),蛋白水平動態(tài)范圍是4.5個(gè)數(shù)量級范圍(圖右)

 展望:

  • 目前SWATH-MS蛋白定量技術(shù)沒有選擇最優(yōu)肽段定量蛋白,是未來優(yōu)化技術(shù)的一個(gè)方向。
  • 本研究證明了SWATH-MS適用大規(guī)模樣本蛋白組學(xué)水平的定量,為后續(xù)的藥物靶點(diǎn)研究、精準(zhǔn)醫(yī)療提供了必要工具。
  • 大規(guī)模樣本量的蛋白組學(xué)定量,可以與基因組學(xué)水平的關(guān)聯(lián)分析,比如基于蛋白表達(dá)水平的數(shù)量遺傳性狀研究、基于蛋白表達(dá)水平的全基因組關(guān)聯(lián)分析和藥物篩選。

2、蛋白定量DIA用于慢性疼痛的研究

Standardized Profiling of The Membrane-Enriched Proteome of MouseDorsal Root Ganglia (DRG) Provides Novel Insights Into Chronic Pain. Molecular& Cellular Proteomics. 2016.

背景:慢性疼痛是一種治療方案有限的復(fù)雜疾病。雖對其發(fā)病機(jī)理進(jìn)行了多次研究,但各結(jié)果間存在較大不一致性,主要受限于傳統(tǒng)蛋白質(zhì)組shotgun技術(shù)固有的缺陷。發(fā)病機(jī)制依然不清晰。

實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

  • 炎癥性疼痛和神經(jīng)性疼痛兩種模型鼠及其對應(yīng)control鼠共4組,各3個(gè)生物學(xué)重復(fù)
  • 每個(gè)生物學(xué)重復(fù)由10-13只鼠pooling而成
  • 解剖獲得同側(cè)背根神經(jīng)節(jié)膜部分提取蛋白進(jìn)行DIA蛋白定量

圖5

圖 5 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)類型

CFA慢性炎癥性疼痛模型、Veh為其對照;SNI慢性神經(jīng)性疼痛模型、Sham為其對照

主要發(fā)現(xiàn)

1)DDA建庫鑒定到3067個(gè)蛋白,迄今鑒定數(shù)最多的背根神經(jīng)節(jié)蛋白研究。

2)DIA四組都鑒定到的蛋白有2526個(gè),其中CFA和Vehicle都鑒定到的有2581個(gè);SNI和Sham都鑒定到的2600個(gè),表明實(shí)驗(yàn)重復(fù)性較好。

3)炎癥性和神經(jīng)性疼痛差異蛋白分別為64和77,兩種模式共有差異蛋白為12個(gè)。

4)其中Serca蛋白在兩種模式小鼠中表達(dá)量變化相反,表明兩種疼痛的調(diào)控機(jī)制不同。

5)western blot和免疫組化對上述DIA結(jié)果進(jìn)行了驗(yàn)證。

圖6

圖6 四組實(shí)驗(yàn)?zāi)P偷牡鞍拙垲惙治?/b>


1、蛋白鑒定和定量概況

表1 各樣本鑒定結(jié)果概覽

Name

Peptide number

Protein number

N_1

73592

7123

N_2

83437

7720

……

……

……

表2差異蛋白統(tǒng)計(jì)列表

Comparsion group

Down-regulated

Non-regulated

Up-regulated

T-VS-N

381

8005

703

XR-VS-N

242

8369

479

XR-VS-T

137

9020

118


圖1  圖1

圖1差異蛋白統(tǒng)計(jì)圖

以Fold change≥2和Q-Value<0.05兩個(gè)條件作為顯著性差異蛋白的篩選標(biāo)準(zhǔn),得到組間上下調(diào)蛋白統(tǒng)計(jì)(左圖)及火山圖(右圖)

 

2、質(zhì)控

 圖2     圖2

圖2CV分布及主成分分析

根據(jù)組內(nèi)變異系數(shù)(CV,左圖)評估實(shí)驗(yàn)的穩(wěn)定性和重復(fù)性;通過主成分分析(PCA,右圖),將同一實(shí)驗(yàn)組不同樣本間聚合成簇。

 

3、功能分析

 圖3     圖3

圖3多樣本關(guān)聯(lián)分析結(jié)果展示

左圖,樣本相關(guān)性分析熱圖;右圖,時(shí)間序列分析

 圖4

圖4顯著富集的pathway統(tǒng)計(jì)圖

圖中x軸富集因子為注釋到該P(yáng)athway的差異蛋白數(shù)除以注釋到該P(yáng)athway的所有鑒定到的蛋白


表1 組織類樣品送樣要求

樣品類型

送樣量

備注

新鮮動物組織干重

≥50mg

富含雜質(zhì)或蛋白質(zhì)含量低的樣品量干重≥5g,如植物的根、木質(zhì)部、韌皮部組織等

植物和蕈類真菌(如蘑菇、木耳)類

樣品量濕重

≥1g

酵母、霉菌類真菌和細(xì)菌、噬菌體等微生物

200mg

新鮮培養(yǎng)細(xì)胞數(shù)(個(gè))

≥3~5×106(細(xì)胞沉淀體積

30ul~50μl左右)

血液類

血清、血漿≥500μl;全血 ≥5ml

解凍后血細(xì)胞會破裂,蛋白溶出來會影響分析,因此一般不建議送全血

表2 蛋白類樣品送樣要求

樣本類型

送樣量

蛋白液

≥200μg,濃度≥1μg/μl


Q1:怎樣選擇標(biāo)記定量或非標(biāo)記定量?

標(biāo)記定量一般用于比較背景相似的樣本間的蛋白組差異,若同組比較的樣本數(shù)≤8,推薦選擇iTRAQ標(biāo)記技術(shù);若同組比較的樣本數(shù)>8且≤10,推薦選擇IBT標(biāo)記技術(shù)。非標(biāo)記定量技術(shù)的限制情況相對較少,無論樣本間背景是否相似,若同組比較樣本數(shù)>10,都可推薦選擇非標(biāo)記蛋白定量DIA;若希望蛋白鑒定數(shù)越多越好,或需要鑒定單個(gè)樣本中的特有蛋白,樣本數(shù)<10,也可推薦使用DIA。

綜上,以下情況可優(yōu)先選擇iTRAQ:

1、定量樣本數(shù)低于8個(gè)(即同時(shí)比較的樣本數(shù)≤8)

2、樣本背景極為相似(相同物種和相同的樣本類型)

3、經(jīng)費(fèi)有限,需要通過高性價(jià)比方案完成研究

4、實(shí)現(xiàn)更好的重復(fù)樣本間的定量重復(fù)性

更適合選擇蛋白DIA定量分析的情況:

1、實(shí)驗(yàn)樣本數(shù)高于10組

2、不同物種、不同來源或部位的樣本,需要同時(shí)進(jìn)行蛋白組分析和定量

4、追求更精準(zhǔn)的定性定量效果,避免標(biāo)記和液相分組引入的實(shí)驗(yàn)誤差

5、需要對采集的數(shù)據(jù)進(jìn)行多次分析

介于9-10個(gè)樣本的項(xiàng)目,推薦華大IBT 10-plex定量產(chǎn)品。

 Q2:蛋白定量DIA和傳統(tǒng)的非標(biāo)記定量有何優(yōu)勢?

傳統(tǒng)的非標(biāo)記定量一般需要通過分級的方法開展,耗時(shí)久、重復(fù)性差、數(shù)據(jù)結(jié)果可信度不高;蛋白定量DIA技術(shù)是新一代非標(biāo)記定量技術(shù),可通過更優(yōu)的數(shù)據(jù)采集模式,在相同時(shí)間采集到更豐富的信息,壓縮周期的同時(shí),大福度提高樣本間平行比較的重復(fù)性,數(shù)據(jù)結(jié)果可信度極高。


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